Voici quelques sources utiles pour compléter le propos :

- Milieux de culture (source : Wikipedia)

- Liste de milieux de culture (source : Wikipedia) (remarque : liste non exhaustive !)

- Les milieux de culture selon leurs usages (source : site internet du Lycée de la Vallée de Chevreuse

8 milieux de culture sont à préparer par groupes de 3 élèves (1 groupe è 1 milieu), leur compostions et mode de préparations sont présentés dans les documents 1 à 

Exlpiquer pourquoi les milieux de culture sont stockés sous forme déshydratés. 

Calculer, en mm³, le volume de milieu coulé dans une petite boîte de Pétri de diamètre 50 mm, sur 3 mm de hauteur. Arrondir la valeur sans virgule. Calculer le volume pour 6 boites.
Convertir le volume précédent en mL (arrondir sans virgule).

Calculer le volume de milieu nécessaire pour préparer 4 grandes boites de pétri (90 mm de diamètre) sachant que la boite doit contenir une hauteur de 3 mm de milie

Matériel biologique : souches bactériennes de classe 1 (bouillons nutritifs ordinaires ensemencés la veille et incubés 24 h à 37 °C)

Préparation du milieu de culture : choisir un milieu de culture par trinôme

• Étiqueter 8 petites boites de Pétri du nom du milieu à préparer.
• Peser la masse nécessaire pour préparer 50 mL de milieu de culture en suivant les consignes des documents 1 à 8 (Attention : masses différentes pur chaque milieu)
• Peser directement dans un bécher la masse voulue.
• Prélever 50 mL d'eau préalablement portée à ébullition avec l'éprouvette graduée.
• Rajouter progressivement les 50 mL d’eau distillée préalablement portée à ébullition tout en agitant jusqu’à dissolution complète.
• Répartir le contenu dans 8 petites boites de Pétri en condition aseptique.
• Une fois solidifiée, distribuer une gélose à chaque autre binôme.

Ensemencement des milieux : 4 milieux par trinôme + 1 micro-organisme

Chaque binôme ensemence un micro-organisme parmi les 8 proposés.
Réaliser un isolement de la souche choisie sur chacun des 4 milieux.

Attention : une bonne organisation est indispensable (étiquetage des boites : nom binôme, nom milieu, nom micro-organisme ensemencé).

Milieux préparés (jour 1) :

Observation des milieux après 24 h de culture (jour 2) :

Milieu DRIGALSKI :

• à droite, une souche lactose (-) qui présente la particularité de produire un pigment rouge (bactérie : Serratia marcescens), et qui est le plus souvent lactose (+) !
• à gauche, une souche lactose (+) (bactérie : Escherichia coli), avec une zone redevenue verte, probablement par réalcalinisation du milieu suite à l'épuisement du lactose à cet endroit (utilisation de peptones)

Conclusion : se méfier des clichés "la microbiologie, c'est plus facile que la biochimie". N'oublions pas que nous travaillons avec des organismes vivants, pas avec des solutions.

Milieu HEKTOEN

Milieu CHAPMAN

• à droite, une souche mannitol (-) qui cultive mais n'acidifie pas le milieu (bactérie : Staphylococcus epidermidis) 
• au centre, une souche mannitol (+) qui cultive ET acidifie le milieu (bactérie : Staphylococcus xylosus) 
• à gauche , une souche mannitol (-)  (bactérie : Pseudomonas fluorescens) ; notons que la couleur du milieu est nettement plus vive que celle du milieu de droite

Milieu EMB

Bactérie Escherichia coli avec son aspect caractéristique sur ce milie (aspect en "dos de scarabée")

Milieu Baird-Parker

Bactérie Staphylococcus xylosus présentant :

- des colonies  noires, due à la réduction du tellurite (présent dans le milieu) en tellure ;

- un halo clair autour de la colonie du à l'hydrolyse (protéolyse) des protéines du jaune d'œuf présent dans le milieu ; 

- un liseré blanc opaque du à l'hydrolyse, par une lécithinase, des lécithines du jaune d'œuf qui se traduit par (précipité blanc des acides gras).